Solène et Manoëlla préparent les extraits (coquillages, phytoplancton) pour l'analyse physico-chimique des toxines.

En sortie du chromatographe et en entrée du spectromètre, la "source ion spray" fait passer les toxines de l'état liquide à l'état gazeux ionique. Elle permet la désolvatation (évaporation de la phase mobile) et l'ionisation des substances pour les rendre détectables sous forme d'ions caractérisés par le rapport entre la masse et la charge (m/z).

Résultat analytique d'un mélange d'étalons de toxines : GYM = gymnodimine ; SPX1 = spirolides ; AO = acide okadaïque ; PTX2 = pectenotoxine-2

Résultat analytique d'un échantillon de coquilles Saint-Jacques contaminées : spectre caractéristique de l'acide okadaïque via les ions fragments fils.

Résultat analytique d'un échantillon de moules contaminées : identification de deux formes moléculaires de spirolides, de l'acide okadaïque et de la pectenotoxine-2.

Orifice : entrée des toxines sous formes ioniques chargées après désolvatation. Skimmer : focalisation des ions chargés (positifs ou négatifs) selon le mode d'ionisation vers les quadripôles et élimination des autres ions.

Q0, quadripôle de confinement, assure le ralentissement des ions avant qu'ils ne soient dirigés vers le quadripôle Q1 (image suivante).

Rail des quadripôles Q1, Q2 et Q3 : Q1 piège les toxines recherchées (ion moléculaire parent) ; Q2 fragmente l'ion parent ; Q3 sélectionne des ions fils issus de l'ion parent. L'utilisation de ces trois quadripôles permet une identification spécifique de la toxine (signature).

Les quadripôles sont démontés pour les opérations de maintenance.

Il ne s'agit pas de la "bougie" du spectromètre de masse, mais de l'émetteur des radiofréquences (RF)...

La chambre à vide (ici "vidée" pour la maintenance) reçoit les quadripôles par lesquels transitent les toxines sous forme ionique jusqu'au déflecteur (point d'impact) qui mesure l'intensité du courant ionique et donc la "quantité" de toxines.

Mise en flacons des échantillons à analyser.

Les échantillons sont prêts à être analysés par chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse ( CL/SM) : mise en place des flacons dans le passeur d'échantillons thermostaté de l'injecteur automatique.

Réservoirs de solvants (phase mobile) du système analytique de chromatographie liquide.

Le système analytique couple la chromatographie liquide (CL) et la spectrométrie de masse (SM).La chromatographie liquide ( à gauche), permet la séparation des substances, dont les toxines recherchées. Le spectromètre de masse triple quadripôle (à droite) est un détecteur universel qui, connecté à la CL, permet de détecter les substances (toxines), les unes après les autres en fonction de l'ordre de sortie de la CL.

Solène et Manoëlla préparent les extraits (coquillages, phytoplancton) pour l'analyse physico-chimique des toxines.

En sortie du chromatographe et en entrée du spectromètre, la "source ion spray" fait passer les toxines de l'état liquide à l'état gazeux ionique. Elle permet la désolvatation (évaporation de la phase mobile) et l'ionisation des substances pour les rendre détectables sous forme d'ions caractérisés par le rapport entre la masse et la charge (m/z).

Résultat analytique d'un mélange d'étalons de toxines : GYM = gymnodimine ; SPX1 = spirolides ; AO = acide okadaïque ; PTX2 = pectenotoxine-2

Résultat analytique d'un échantillon de coquilles Saint-Jacques contaminées : spectre caractéristique de l'acide okadaïque via les ions fragments fils.

Résultat analytique d'un échantillon de moules contaminées : identification de deux formes moléculaires de spirolides, de l'acide okadaïque et de la pectenotoxine-2.

Orifice : entrée des toxines sous formes ioniques chargées après désolvatation. Skimmer : focalisation des ions chargés (positifs ou négatifs) selon le mode d'ionisation vers les quadripôles et élimination des autres ions.

Q0, quadripôle de confinement, assure le ralentissement des ions avant qu'ils ne soient dirigés vers le quadripôle Q1 (image suivante).

Rail des quadripôles Q1, Q2 et Q3 : Q1 piège les toxines recherchées (ion moléculaire parent) ; Q2 fragmente l'ion parent ; Q3 sélectionne des ions fils issus de l'ion parent. L'utilisation de ces trois quadripôles permet une identification spécifique de la toxine (signature).

Les quadripôles sont démontés pour les opérations de maintenance.

Il ne s'agit pas de la "bougie" du spectromètre de masse, mais de l'émetteur des radiofréquences (RF)...

La chambre à vide (ici "vidée" pour la maintenance) reçoit les quadripôles par lesquels transitent les toxines sous forme ionique jusqu'au déflecteur (point d'impact) qui mesure l'intensité du courant ionique et donc la "quantité" de toxines.

Mise en flacons des échantillons à analyser.

Les échantillons sont prêts à être analysés par chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse ( CL/SM) : mise en place des flacons dans le passeur d'échantillons thermostaté de l'injecteur automatique.

Réservoirs de solvants (phase mobile) du système analytique de chromatographie liquide.

Le système analytique couple la chromatographie liquide (CL) et la spectrométrie de masse (SM).La chromatographie liquide ( à gauche), permet la séparation des substances, dont les toxines recherchées. Le spectromètre de masse triple quadripôle (à droite) est un détecteur universel qui, connecté à la CL, permet de détecter les substances (toxines), les unes après les autres en fonction de l'ordre de sortie de la CL.

Solène et Manoëlla préparent les extraits (coquillages, phytoplancton) pour l'analyse physico-chimique des toxines.

En sortie du chromatographe et en entrée du spectromètre, la "source ion spray" fait passer les toxines de l'état liquide à l'état gazeux ionique. Elle permet la désolvatation (évaporation de la phase mobile) et l'ionisation des substances pour les rendre détectables sous forme d'ions caractérisés par le rapport entre la masse et la charge (m/z).

Résultat analytique d'un mélange d'étalons de toxines : GYM = gymnodimine ; SPX1 = spirolides ; AO = acide okadaïque ; PTX2 = pectenotoxine-2

Résultat analytique d'un échantillon de coquilles Saint-Jacques contaminées : spectre caractéristique de l'acide okadaïque via les ions fragments fils.

Résultat analytique d'un échantillon de moules contaminées : identification de deux formes moléculaires de spirolides, de l'acide okadaïque et de la pectenotoxine-2.

Orifice : entrée des toxines sous formes ioniques chargées après désolvatation. Skimmer : focalisation des ions chargés (positifs ou négatifs) selon le mode d'ionisation vers les quadripôles et élimination des autres ions.

Q0, quadripôle de confinement, assure le ralentissement des ions avant qu'ils ne soient dirigés vers le quadripôle Q1 (image suivante).

Rail des quadripôles Q1, Q2 et Q3 : Q1 piège les toxines recherchées (ion moléculaire parent) ; Q2 fragmente l'ion parent ; Q3 sélectionne des ions fils issus de l'ion parent. L'utilisation de ces trois quadripôles permet une identification spécifique de la toxine (signature).

Les quadripôles sont démontés pour les opérations de maintenance.

Il ne s'agit pas de la "bougie" du spectromètre de masse, mais de l'émetteur des radiofréquences (RF)...

La chambre à vide (ici "vidée" pour la maintenance) reçoit les quadripôles par lesquels transitent les toxines sous forme ionique jusqu'au déflecteur (point d'impact) qui mesure l'intensité du courant ionique et donc la "quantité" de toxines.

Mise en flacons des échantillons à analyser.

Les échantillons sont prêts à être analysés par chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse ( CL/SM) : mise en place des flacons dans le passeur d'échantillons thermostaté de l'injecteur automatique.

Réservoirs de solvants (phase mobile) du système analytique de chromatographie liquide.

Le système analytique couple la chromatographie liquide (CL) et la spectrométrie de masse (SM).La chromatographie liquide ( à gauche), permet la séparation des substances, dont les toxines recherchées. Le spectromètre de masse triple quadripôle (à droite) est un détecteur universel qui, connecté à la CL, permet de détecter les substances (toxines), les unes après les autres en fonction de l'ordre de sortie de la CL.

Solène et Manoëlla préparent les extraits (coquillages, phytoplancton) pour l'analyse physico-chimique des toxines.

En sortie du chromatographe et en entrée du spectromètre, la "source ion spray" fait passer les toxines de l'état liquide à l'état gazeux ionique. Elle permet la désolvatation (évaporation de la phase mobile) et l'ionisation des substances pour les rendre détectables sous forme d'ions caractérisés par le rapport entre la masse et la charge (m/z).

Résultat analytique d'un mélange d'étalons de toxines : GYM = gymnodimine ; SPX1 = spirolides ; AO = acide okadaïque ; PTX2 = pectenotoxine-2

Résultat analytique d'un échantillon de coquilles Saint-Jacques contaminées : spectre caractéristique de l'acide okadaïque via les ions fragments fils.

Résultat analytique d'un échantillon de moules contaminées : identification de deux formes moléculaires de spirolides, de l'acide okadaïque et de la pectenotoxine-2.

Orifice : entrée des toxines sous formes ioniques chargées après désolvatation. Skimmer : focalisation des ions chargés (positifs ou négatifs) selon le mode d'ionisation vers les quadripôles et élimination des autres ions.

Q0, quadripôle de confinement, assure le ralentissement des ions avant qu'ils ne soient dirigés vers le quadripôle Q1 (image suivante).

Rail des quadripôles Q1, Q2 et Q3 : Q1 piège les toxines recherchées (ion moléculaire parent) ; Q2 fragmente l'ion parent ; Q3 sélectionne des ions fils issus de l'ion parent. L'utilisation de ces trois quadripôles permet une identification spécifique de la toxine (signature).

Les quadripôles sont démontés pour les opérations de maintenance.

Il ne s'agit pas de la "bougie" du spectromètre de masse, mais de l'émetteur des radiofréquences (RF)...

La chambre à vide (ici "vidée" pour la maintenance) reçoit les quadripôles par lesquels transitent les toxines sous forme ionique jusqu'au déflecteur (point d'impact) qui mesure l'intensité du courant ionique et donc la "quantité" de toxines.

Mise en flacons des échantillons à analyser.

Les échantillons sont prêts à être analysés par chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse ( CL/SM) : mise en place des flacons dans le passeur d'échantillons thermostaté de l'injecteur automatique.

Réservoirs de solvants (phase mobile) du système analytique de chromatographie liquide.

Le système analytique couple la chromatographie liquide (CL) et la spectrométrie de masse (SM).La chromatographie liquide ( à gauche), permet la séparation des substances, dont les toxines recherchées. Le spectromètre de masse triple quadripôle (à droite) est un détecteur universel qui, connecté à la CL, permet de détecter les substances (toxines), les unes après les autres en fonction de l'ordre de sortie de la CL.

Solène et Manoëlla préparent les extraits (coquillages, phytoplancton) pour l'analyse physico-chimique des toxines.

En sortie du chromatographe et en entrée du spectromètre, la "source ion spray" fait passer les toxines de l'état liquide à l'état gazeux ionique. Elle permet la désolvatation (évaporation de la phase mobile) et l'ionisation des substances pour les rendre détectables sous forme d'ions caractérisés par le rapport entre la masse et la charge (m/z).

Résultat analytique d'un mélange d'étalons de toxines : GYM = gymnodimine ; SPX1 = spirolides ; AO = acide okadaïque ; PTX2 = pectenotoxine-2

Résultat analytique d'un échantillon de coquilles Saint-Jacques contaminées : spectre caractéristique de l'acide okadaïque via les ions fragments fils.

Résultat analytique d'un échantillon de moules contaminées : identification de deux formes moléculaires de spirolides, de l'acide okadaïque et de la pectenotoxine-2.

Orifice : entrée des toxines sous formes ioniques chargées après désolvatation. Skimmer : focalisation des ions chargés (positifs ou négatifs) selon le mode d'ionisation vers les quadripôles et élimination des autres ions.

Q0, quadripôle de confinement, assure le ralentissement des ions avant qu'ils ne soient dirigés vers le quadripôle Q1 (image suivante).

Rail des quadripôles Q1, Q2 et Q3 : Q1 piège les toxines recherchées (ion moléculaire parent) ; Q2 fragmente l'ion parent ; Q3 sélectionne des ions fils issus de l'ion parent. L'utilisation de ces trois quadripôles permet une identification spécifique de la toxine (signature).

Les quadripôles sont démontés pour les opérations de maintenance.

Il ne s'agit pas de la "bougie" du spectromètre de masse, mais de l'émetteur des radiofréquences (RF)...

La chambre à vide (ici "vidée" pour la maintenance) reçoit les quadripôles par lesquels transitent les toxines sous forme ionique jusqu'au déflecteur (point d'impact) qui mesure l'intensité du courant ionique et donc la "quantité" de toxines.

Mise en flacons des échantillons à analyser.

Les échantillons sont prêts à être analysés par chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse ( CL/SM) : mise en place des flacons dans le passeur d'échantillons thermostaté de l'injecteur automatique.

Réservoirs de solvants (phase mobile) du système analytique de chromatographie liquide.

Le système analytique couple la chromatographie liquide (CL) et la spectrométrie de masse (SM).La chromatographie liquide ( à gauche), permet la séparation des substances, dont les toxines recherchées. Le spectromètre de masse triple quadripôle (à droite) est un détecteur universel qui, connecté à la CL, permet de détecter les substances (toxines), les unes après les autres en fonction de l'ordre de sortie de la CL.